各位老师、同学：

      第一届摄影大赛已截止收稿，现将参赛作品展出。

一、1号作品展示

作品名称：基于AAV追踪技术的SCN-ARC神经环路荧光可视化

      通过脑立体定位技术在Six-Cre小鼠SCN注射直接投射追踪病毒：AAV-DIO-Ypet-EGFP，病毒表达三周后，收集小鼠脑组织进行冰冻切片，观察SCN中Six6神经元可以投射至哪些脑区或者核团。发现Six6神经元可以调控下丘脑弓状核ARC，ARC是调控小鼠进食量的关键核团，证实了动物的每日进食量也受到SCN的调控。

      利用奥林巴斯FV3000 20X背景下拍摄照片，病毒感染SCN后通过SCN轴突连接到ARC。样品制备难度：实验全程技术门槛高，需完成多步精密操作。包括脑立体定位注射的精准度控制（误差需控制在微米级）、病毒表达周期的严格把控，以及脑组织冰冻切片的完整性维持，任何一步操作偏差均会导致实验失败。

      成像技术与质量：采用奥林巴斯FV3000高端共聚焦显微镜，通过优化激光强度、扫描速度等参数，实现高分辨率成像。图像中神经元胞体、轴突分支及投射路径均清晰可辨，无荧光淬灭、信号模糊等问题，成像质量达到科研级高标准。以SCN区域为视觉中心，清晰呈现被荧光病毒标记的Six6神经元胞体及轴突纤维，轴突向ARC区域的投射轨迹构成自然的视觉延伸，构图主次分明。

      视觉效果：荧光信号明亮且特异性高，背景干扰低，绿色荧光（Ypet-EGFP）在脑组织切片背景中形成鲜明对比，既直观展现神经投射的形态美，又兼具科学图像的简洁性与辨识度。

二、2号作品展示

作品名称：脑海星河

      样品信息：野生型果蝇脑组织的神经元投射

      制备方法：解剖果蝇完整脑组织，利用PDF抗体以及荧光二抗进行免疫荧光染色

      拍摄参数：40倍镜

三、3号作品展示

作品名称：肠韵·隐窝-绒毛轴的微观秩序——ZO-1标记结肠类器官的形态发生

      科学故事：肠道上皮屏障是人体最大的黏膜屏障，其完整性依赖于紧密连接（Tight Junctions）的精密调控。本作品展示的是体外培养的结肠类器官——这一革命性的3D培养体系能够在体外重现肠道的自我更新与分化过程。图像中，ZO-1蛋白如金色的丝线（伪彩色处理前为绿色）编织成完美的六边形网络，精准勾勒出每个上皮细胞的边界，揭示了细胞间连接的分子级秩序；蓝色的细胞核如繁星点缀其间，标记着生命的坐标。中央的腔体（Lumen）清晰可辨，标志着类器官已建立成熟的极性结构。

      技术创新点：① 样品制备：采用低温机械分离结合优化透化方案，首次在类器官中实现了ZO-1的全结构完整标记，避免了传统振动切片导致的结构变形；② 成像策略：运用光学切片技术穿透厚样品（>50μm），通过Z-stack采集完整三维信息；③ 图像处理：创新性地采用Fire色表渲染ZO-1信号，将强度信息转化为温度感知的色彩梯度，既保留了定量关系，又赋予图像火山熔岩般的视觉张力。

      视觉呈现：构图上，主类器官占据画面黄金分割点，周围散布的卫星类器官形成众星拱月之势，黑色背景营造出宇宙深空的沉浸感。ZO-1的网状结构既像精密的集成电路，又似蜂巢的几何美学，隐喻生命系统在分子层面的自组织智慧。色彩选择上，红与蓝的冷暖对比象征动态平衡——红色代表细胞间的紧密连接（屏障功能），蓝色代表遗传信息的储存（生命延续），共同诠释"求真于微观，求精于技术，求美于自然"的竞赛主题。

四、4号作品展示

作品名称：绛川流萤

      模型：鼠源结肠类器官

      染色靶点：采用免疫荧光染色。MUC2是由杯状细胞分泌的核心黏液成分，是构成肠道化学屏障的关键，用红色荧光标记；MUC13是一种膜相关黏蛋白，也参与肠道屏障保护，并在溃疡性结肠炎等疾病中表达异常，用绿色荧光标记。

      科学内涵：本作品通过双色标记，直观展示了在结肠类器官中形成的关键黏液屏障系统。MUC2（红）象征着杯状细胞分泌并储备的黏液“战略库”；而MUC13（绿）则代表在上皮细胞表面即时响应的保护“盔甲”。二者协同作用，是维持肠道内环境稳定、抵御外界刺激的基石。

      作品名称描述：在这微观世界里，红色的MUC2如一条滋养的“绛川”，充盈在肠腔之中，为肠道菌群和细胞提供生存环境；而绿色的MUC13信号点染其上，如同夜幕中沿河飞舞的“流萤”，它们动态地闪烁、守护，象征着生命屏障的活力与精密。“绛川”为“流萤”提供舞台，而“流萤”为“绛川”点亮哨塔，生动诠释了肠道黏膜屏障“求真、求精、求美”的复杂生理功能与结构之美。

      样品制备方法：

      培养：类器官采用Matrigel基质胶圆顶包埋法培养于24孔板中 ；染色：使用cell recovery solution溶胶后，依次经过4%多聚甲醛溶液固定，PBST破膜，BSA封闭，依次孵育MUC2和MUC13的一抗及相应的荧光二抗，并使用DAPI对细胞核进行复染；封片：使用抗荧光淬灭封片剂封片。

      拍摄参数及图像处理方式：

      设备：奥林巴斯FV3000共聚焦显微镜；关键参数：采用序列扫描以减少通道间串扰；根据需要设置Z轴层数以获取三维信息；图像处理：对获得的Z-stack图像进行最大强度投影（Maximum Intensity Projection），以展示类器官整体的蛋白分布；可能进行了简单的均匀化处理以优化整体对比度，但未进行任何影响科学真实性的拼接或修改。

五、5号作品展示

作品名称：蝶梦：果蝇大脑自噬通路的立体荧光交响

      名称解读：“蝶梦”：化用“庄周梦蝶”典故，隐喻果蝇大脑内部微观世界的神秘与复杂性，也暗示了自噬作为细胞“自我吞噬与重生”的生命之梦。

1.样品信息

      生物模型：黑腹果蝇；基因型：ATG8a-GFP-mCherry/+;Repo-GAL4>CHMP2B^IN5；Repo-GAL4：胶质细胞特异性启动子，确保目标蛋白仅在胶质细胞中表达；ATG8a：自噬的关键标志蛋白，与自噬体膜结合，是监测自噬流的核心分子；GFP (绿色荧光蛋白)与mCherry(红色荧光蛋白)：融合在ATG8a上的双荧光报告标签。在酸性自噬溶酶体中，GFP荧光淬灭，而mCherry稳定，通过红/绿信号比例可直观判断自噬体的成熟状态。

2.样品制备方法

      1.果蝇培养与解剖：在适宜条件下培养目标基因型果蝇，在CO₂麻醉下，于S2细胞培养基中快速解剖出完整大脑。2.固定与通透：使用4%多聚甲醛固定组织，以保持结构。3.封片：将样品置于抗荧光淬灭封片剂中，用盖玻片封固，避免成像过程中样品移动或荧光衰减。

3.拍摄参数与图像处理方式

      成像设备：奥林巴斯FV3000；物镜：10倍数值孔径物镜；激光线：488 nm (激发GFP)，561 nm (激发mCherry)；检测通道：分别设置500-540 nm (GFP发射)和570-620 nm (mCherry发射) 的通道采集信号，避免串色；Z轴层扫：设置步进为7μm，对全脑进行连续光学切片扫描，生成Z-stack序列；分辨率：1024 x 1024，确保空间细节；三维重构:点击volume按钮可将Z序列图像进行三维重构；视频制作：在3D软件中设置相机飞行路径，让重建的大脑模型进行360度旋转或分层切入动画，并输出为高清MP4格式视频。

4.作品的简单说明

      本作品利用FTD果蝇疾病模型，通过双荧光自噬报告系统，在胶质细胞中直观呈现了自噬流状态。绿色信号指示自噬体形成，红色信号指示酸性自噬溶酶体。在疾病模型中，两者空间关系与比例的变化，直接揭示了自噬成熟过程可能发生的阻滞或紊乱，为理解额颞叶痴呆的蛋白质代谢障碍提供了视觉证据。